近日，实验室隋正红教授团队在龙须菜基因编辑体系构建方向取得重要进展，研究成果“CRISPR/LbCas12a-mediated targeted mutation of Gracilariopsis lemaneiformis（CRISPR / LbCas12a介导的龙须菜靶基因突变）”在线发表在知名期刊Plant Biotechnology Journal（植物生物技术），文章首次报道了在红藻龙须菜中基于CRISPR / LbCas12a基因编辑系统实现目标基因的突变，该研究也为大型海藻基因编辑技术体系构建提供了重要参考。

 龙须菜是一种重要的大型经济海藻，是琼胶的主要原材料和鲍鱼的饵料，但是目前缺乏对龙须菜进行遗传改造的技术手段，限制了龙须菜的高效育种开发。由于大型海藻特殊的生物学特性，目前尚未有成功实现基因编辑的报道。为了解决这一难题，研究团队制定了通过基因枪转化Cas12a蛋白与gRNA复合体的方案，大大简化了实验流程。CRISPR / LbCas12a系统是一种高效的基因编辑手段，目前已经成功地应用于多个物种中，实现了基因敲除、激活或抑制。研究团队在大型海藻龙须菜中实现CRISPR / LbCas12a基因编辑，为龙须菜的基因功能研究提供了重要的技术手段，对遗传育种具有重要意义。

 该研究首先针对龙须菜的一种胞外碳酸酐酶基因设计了6个靶位点，并在体外验证了针对这6个靶位点的gRNA效率。在这6个靶位点中挑选了两个效率最高的gRNA，并将它们分别与LbCas12a蛋白孵育形成蛋白质核酸复合体（RNP），使用基因枪分别将各RNP轰击转化进龙须菜藻尖中。培养5天后，PCR扩增碳酸酐酶基因，通过单链构象多态性分析（SSCP）将疑似突变的片段富集后进行单克隆测序，检测到了发生在靶位点附近的碱基替换结果。为了能够直观地区分转化细胞和正常细胞，该研究又选择了藻红蛋白的γ亚基作为靶基因。针对每一个藻红蛋白的γ亚基基因，分别设计了两个靶位点并进行体外效率验证。将所有靶位点中效率最高的一个gRNA与Cas12a蛋白转化进入到龙须菜藻尖中。5天后，在荧光显微镜下观察到了龙须菜藻体表面转化细胞的自发荧光发生改变，形成了区别于正常细胞的“色斑”。通过单克隆测序检测到了靶位点附近的碱基替换及靶位点上游的碱基插入和缺失。

图1 利用CRISPR / LbCas12a系统对龙须菜进行基因编辑。通过体外转录本合成gRNA后（A），与Cas12a蛋白进行孵育后转化到龙须菜藻尖中（B），在藻尖中检测到了转化细胞自发荧光发生了变化（C）

   中国海洋大学海洋生命学院张敬宇、吴琼及Morgane Eléouët博士为论文的共同第一作者，隋正红教授和胡依依博士为共同通讯作者。这项工作得到了农业农村部和财政部国家藻类产业技术体系和国家自然科学基金项目的资助。

原文链接：https://onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1111/pbi.13949